ICS 11.220
B 41
团体标准
T/CVMA 44-2020
犬冠状病毒 RT-PCR检测方法
Detection of canine c oronavirus by RT -PCR
2020-12-22发布 2020-12-22实施
中 国 兽 医 协 会 发布
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I 前 言
本文件按 照GB/T 1.1 —2020《标准化工作导则 第1部分:标准化文件的结构和起草规则》的规定起
草。
请注意本文件的某些内容可能涉及专利 。本文件的发布机构不承担 识别专利的责任。
本文件由青岛农业大学提出。
本文件由中国兽医协会归口。
本文件起草单位:青岛农业大学、中国动物卫生与流行病学中心、中国兽医药品监察所、青岛海润
检测股份有限公司、上海基灵生物科技有限公司、 莱阳市农业农村局。
本文件主要起草 人:张传美、单虎、王媛媛、印春生、刘刚、朱旭、刘佳卉、张洪亮、杨海燕、孙
建华、于静静。
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1 犬冠状病毒 RT-PCR检测方法
1 范围
本文件规定了犬冠状病毒 RT-PCR检测方法的操作步骤和结果判定。
本文件适用于犬、狐狸等犬科动物粪便、肛拭子或肠道组织中犬冠状病毒核酸的实验室检测。
2 规范性引用文件
下列文件中的 内容通过文中的规范性引用而构成本文件必不可少的条 款。 其中,注日期的引用文件,
仅该日期对 应的版本适用于本文件;不注日期的引用文件,其最新版本(包括所有的修改单)适用于本
文件。
GB/T 6682 分析实验室用水规格和试验方法
GB 19489 实验室生物安全通用要求
NY/T 541 兽医诊断样品采集、保存与运输技术规范
3 术语和定义
本文件没有需要界定的术语和定义。
4 缩略语
下列缩略语适用于本文件。
RT-PCR:逆转录 -聚合酶链反应( reverse transcription -polymerase chain reaction )
CCV:犬冠状病毒( canine coronavirus )
RNA:核糖核酸( ribonucleic acid )
PBS:磷酸盐缓冲液( phosphate -buffered saline buffer )
5 试剂和材料
5.1 试剂
5.1.1 总则:除非另有说明,所用试剂均为分析纯,试验用水符合 GB/T 6682 的要求,所有试剂均用
无RNA酶的容器分装。
5.1.2 市售商品化病毒 RNA提取试剂盒。
5.1.3 市售商品化一步法 RT-PCR试剂盒,包括一步法 RT-PCR缓冲液、 Taq DNA聚合酶 -反转录酶 -
RNA酶抑制剂混合物、灭菌去离子水。
5.1.4 PBS溶液,按附录 A.1配制。
5.1.5 TAE电泳缓冲液 :50× TAE贮存液,按附录 A.2配制,临用时加蒸馏水配成 1× TAE缓冲液。
5.1.6 1%琼脂糖凝胶,按附录 A.3配制。
5.1.7 Goldview 核酸染料。
5.1.8 DNA 分子量标准: DL2000 DNA marker。
5.1.9 上游引物 CTCGTGGYCGGAAGAATAAT -3’;下游引物: 5’-GCAACCCAGAMRACTCCATC -
3’;目的片段 280 bp。M、R为兼并碱基; M:A、C;R:A、G。
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2 5.2 材料
5.2.1 RNase free 离心管: 1.5 mL、10 mL
5.2.2 0.2 mL PCR薄壁管
5.2.3 移液器吸头: 10 μL、200 μ L、1000 μ L
5.2.4 医用棉签
6 仪器设备
6.1 生物安全柜或超净工作台
6.2 冰箱: 2 ℃~8 ℃、-20 ℃
6.3 高压蒸汽灭菌器
6.4 组织研磨仪
6.5 涡旋振荡器
6.6 微量移液器( 0.1 μL~2.5 μL、0.5 μL~10 μL、10 μL~100 μL、100 μL~1000 μL)
6.7 基因扩增仪
6.8 高速离心机( 8000 g以上)
6.9 分析天平
6.10 水平电泳仪
6.11 凝胶成像系统
7 样品的采集和前处理
7.1 总则
样品的采集、保存与运输 按照 NY/T 541 执行。生物安全要求按照 GB 19489 的规定。
7.2 采样器具处理
医用棉签、离心管及 PBS溶液经119 ℃~123 ℃高压蒸汽灭菌 15 min。
7.3 样品前处理
7.3.1 粪便
采集新鲜粪便中间未暴露部分 0.5 g ~1 g,放入 10 mL离心管中,加入 5mL~10 mL PBS 稀释,震荡
混匀,将稀释后的样品置于带有冰袋的样品运输箱内,送至实验室, 8000 g离心 5 min,取上清液待检。
7.3.2 肛拭子
将无菌棉签用 PBS浸湿后,轻轻旋转插入肛门深处 3 cm~5 cm,稍作停顿并旋转棉签,放入 1.5 mL
离心管,加入 1 mL PBS 稀释,震荡混匀后弃去棉签,将稀释后的样品置于带有冰袋的样品运输箱内,
送至实验室, 8000 g离心 5 min,取上清液待检。
7.3.3 肠道组织
取0.5 g ~1 g肠道组织,加入 5 mL ~10 mL PBS ,使用组织研磨仪研磨匀浆,或刮取病变肠道肠粘膜
0.5 g ~1 g加入 10 mL PBS 混匀,制成组织悬液,将稀释后的样品置于带有冰袋的样品运输箱内,送至
实验室, 8000 g离心 5 min,取上清液待检。
8 操作方法
8.1 病毒RNA的提取
8.1.1 在样本制备区进行。
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3 8.1.2 采用市售的病毒 RNA提取试剂盒按照说明书操作,也可采用其他等效的 RNA提取方法。在
生物安全柜或超净工作台中提取样品 RNA,提取过程应设立阴性和阳性对照。获得 RNA溶液,可直
接用于检测或保存于 -20 ℃备用。
8.2 扩增试剂的准备与配制
8.2.1 反应混合物在配制区进行。
8.2.2 每个检测反应体系需要 23 µ L RT -PCR反应液。按附录 A.4配制反应液,转移反应管至样本制
备区。
8.3 加样
8.3.1 在样本制备区进行。
8.3.2 在上述 8.2.2的反应管中分别加入 8.1.1中制备的 RNA溶液 2 µ L,使每管总体积达到 25 µ L,
记录反应管对应的样品编号。盖紧管盖后,瞬时离心。
8.4 RT-PCR反应
8.4.1 在扩增区进行。
8.4.2 将8.3.2中加样后的反应管放入基因扩增仪中,反应参数设置如下: 50 ℃ 30 min ;94 ℃ 3
min;94 ℃ 30 s,50 ℃ 30 s,72 ℃ 1 min,35个循环; 72 ℃ 5 min。
8.5 扩增产物电泳检测
8.5.1 在电泳成像区进行。
8.5.2 取5 μL PCR 扩增产物和 1 μL 6×Loading buffer加样缓冲液混匀后加入一个加样孔。每次电泳
同时设标准 DNA Marker 、阴性对照、阳性对照。
8.5.3 设置电压 80 V,电泳 30 min。
8.5.4 电泳结束后由凝胶成像系统观察并拍照记录。
9 结果判定
9.1 结果分析条件设定
阳性对照品出现 280 bp扩增条带,同时阴性对照品无扩增条带 (见附录 B)。
9.2 结果描述与判定
待检样品扩增产物电泳出现 280 bp目标条带,判为 RT-PCR扩增阳性,表明样品中存在犬冠状病
毒核酸;待检样品无扩增条带或扩增条带与预期大小不符,判为 PCR扩增阴性,表明样品中无犬冠状
病毒核酸。
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4 A
A
附 录 A
(规范性)
溶液的配制
A.1 0.01 mol/L PBS 溶液( pH 7.2 ~pH 7.4)
准确称量下面氯化钠 (NaCl) 8.00 g 、氯化钾 (KCl) 、磷酸二氢钾 (KH 2PO 4) 0.24 g、磷酸氢二钠
(Na 2HPO 4·12H 2O) 3.65 g ,加入到 800 mL蒸馏水中溶解,调 pH至7.2~7.4,加水定容至 1 L。分装后
121 ℃灭菌 15 min ~20 min,或过滤除菌,保存于室温。
A.2 TAE电泳缓冲液
50× TAE贮存液:三羟甲基氨基甲烷( Tris)242.0 g、冰乙酸 57.1 mL、0.5 mol/L 乙二胺四乙酸
(EDTA)( pH8.0)100.0 mL ,加双蒸水至 1000 mL。使用时稀释至 1×工作浓度。
A.3 1%琼脂糖凝胶
称取 1 g琼脂糖置于锥形瓶中,加入 100 mL 1× TAE 缓冲液。微波炉加热煮沸至琼脂糖全部融化, 加
入适量染料,混匀,倒入制胶板中,即成 1 %琼脂糖凝胶。
A.4 RT-PCR反应液配方
组分 1个检测体系的加入量
2×
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